ЦИТОМОРФОЛОГИЧЕСКИЕ ОСОБЕННОСТИ ГРАНУЛЕЗНЫХ КЛЕТОК ФОЛЛИКУЛЯРНОЙ ЖИДКОСТИ ПРИ ЭКСТРАКОРПОРАЛЬНОМ ОПЛОДОТВОРЕНИИ

  • П. М. Мотолянец Республиканский клинический медицинский центр Управления делами Президента Республики Беларусь, Минск, Беларусь
  • О. А. Юдина Республиканский клинический медицинский центр Управления делами Президента Республики Беларусь, Минск, Беларусь
  • А. З. Смоленский Республиканский клинический медицинский центр Управления делами Президента Республики Беларусь, Минск, Беларусь
Ключевые слова: фолликулярная жидкость, гранулезные клетки, клеточный блок

Аннотация

Цель исследования. Изучение цитоморфологических характеристик гранулезных клеток фолликулярной жидкости для определения потенциальных предикторов успешной имплантации эмбриона при экстракорпоральном оплодотворении. Материал и методы. В исследование включены 170 образцов фолликулярной жидкости, полученной при аспирации ооцит-кумулюсных комплексов для проведения экстракорпорального оплодотворения в связи с бесплодием. С учетом критериев исключения сформированы две исследуемые группы (ИГ): ИГ1 – имплантация эмбриона не наступила (n=61), ИГ2 – имплантация эмбриона наступила (n=54). Проведена сравнительная оценка групп по возрасту, длительности бесплодия, индексу массы тела, объему исследованной фолликулярной жидкости, количеству пунктированных фолликулов и количеству полученных ооцитов. Исследуемые группы также сравнивали по количеству гранулезных клеток в препаратах и среднему размеру их ядер. Оценивали гетерогенность размеров ядер гранулезных клеток. Результаты. Установлены статистически значимые различия между ИГ1 и ИГ2 по числу полученных ооцитов (р=0,043), количеству и средним размерам ядер гранулезных клеток в препаратах (р=0,005 и p=0,0001 соответственно). Большая гетерогенность размеров ядер гранулезных клеток выявлена в ИГ1 по сравнению с ИГ2. Выводы. Установлено, что фолликулярная жидкость при успешной имплантации эмбриона (ИГ2) характеризуется большей клеточностью препаратов, связанной с большим количеством париетальных клеток и их слоев в фолликуле, а также большим средним размером ядер гранулезных клеток, что обусловлено преобладанием в фолликулах зрелых (внутренних париетальных) клеток. Выраженная гетерогенность размеров ядер гранулезных клеток выявлена при отсутствии имплантации эмбриона (ИГ1) и указывает на присутствие в фолликуле значимого количества незрелых (наружных париетальных) гранулезных клеток.

Литература

Komatsu K, Masubuchi S. Mouse oocytes connect with granulosa cells by fusing with cell membranes and form a large complex during follicle development. Biol Reprod. 2018;99(3):527-535. https://doi.org/10.1093/biolre/ioy072.

Li R, Norman RJ, Armstrong DT, Gilchrist RB. Oocyte-secreted factor(s) determine functional differences between bovine mural granulosa cells and cumulus cells. Biology of Reproduction. 2000;63(3):839-845. https://doi.org/10.1095/biolreprod63.3.839.

Jones ASK, Shikanov A. Follicle development as an orchestrated signaling network in a 3D organoid. J Biol Eng. 2019;13:2. https://doi.org/10.1186/s13036-018-0134-3.

Clarke HJ. Regulation of germ cell development by intercellular signaling in the mammalian ovarian follicle. Wiley Interdiscip Rev Dev Biol. 2018;7(1):е294. https://doi.org/10.1002/wdev.294.

Sheikh S, Lo BKM, Kaune H, Bansal J, Deleva A, Williams SA. Rescue of follicle development after oocyte-induced ovary dysfunction and infertility in a model of POI. Front Cell Dev Biol. 2023;11(1):1202411. https://doi.org/10.3389/fcell.2023.1202411.

de Koning R, Blikkendaal MD, de Sousa Lopes SMC, van der Meeren LE, Cheng H, Jansen FW, Lashley EELO. Histological analysis of (antral) follicle density in ovarian cortex tissue attached to stripped endometriomas. J Assist Reprod Genet. 2024;41(4):1067-1076. https://doi.org/10.1007/s10815-024-03058-0.

Telfer EE, Grosbois J, Odey YL, Rosario R, Anderson RA. Making a good egg: human oocyte health, aging, and in vitro development. Physiol Rev. 2023;103(4):2623-2677. https://doi.org/10.1152/physrev.00032.2022.

Hirshfield AN. Development of follicles in the mammalian ovary. Int Rev Cytol. 1991;124:43-101. https://doi.org/10.1016/s0074-7696(08)61524-7.

Baena V, Terasaki M. Three-dimensional organization of transzonal projections and other cytoplasmic extensions in the mouse ovarian follicle. Sci Rep. 2019;9(1):1262. https://doi.org/10.1038/s41598-018-37766-2.

Jiang Y, He Y, Pan X, Wang P, Yuan X, Ma B. Advances in Oocyte Maturation In Vivo and In Vitro in Mammals. Int J Mol Sci. 2023;24(10):9059. https://doi.org/10.3390/ijms24109059.

Chakravarthi VP, Ratri A, Masumi S, Borosha S, Ghosh S, Christenson LK, Roby KF, Wolfe MW, Rumi MAK. Granulosa cell genes that regulate ovarian follicle development beyond the antral stage: The role of estrogen receptor β. Mol Cell Endocrinol. 2021;528:111212. https://doi.org/10.1016/j.mce.2021.111212.

Srivastava LK, Ehrlicher AJ. Sensing the squeeze: nuclear mechanotransduction in health and disease. Nucleus. 2024;15(1):2374854. https://doi.org/10.1080/19491034.2024.2374854.

Webster M, Witkin KL, Cohen-Fix O. Sizing up the nucleus: nuclear shape, size and nuclear-envelope assembly. J Cell Sci. 2009;122(10):1477-1486. https://doi.org/10.1242/jcs.037333.

Zidovska A. The rich inner life of the cell nucleus: dynamic organization, active flows, and emergent rheology. Biophysical reviews. 2020;12(5):1093-1106. https://doi.org/10.1007/s12551-020-00761-x.

Hertzog M, Erdel F. The Material Properties of the Cell Nucleus: A Matter of Scale. Cells. 2023;12(15):1958. https://doi.org/10.3390/cells12151958.

Kalukula Y, Stephens AD, Lammerding J, Gabriele S. Mechanics and functional consequences of nuclear deformations. Nat Rev Mol Cell Biol. 2022;23(9):583-602. https://doi.org/10.1038/s41580-022-00480-z.

Efremov AK, Hovan L, Yan J. Nucleus size and its effect on nucleosome stability in living cells. Biophys J. 2022;121(21):4189-4204. https://doi.org/10.1016/j.bpj.2022.09.019.

Ikeda H, Miyao S, Nagaoka S, Takashima T, Law SM, Yamamoto T, Kurimoto K. High-quality single-cell transcriptomics from ovarian histological sections during folliculogenesis. Life Sci Alliance. 2023;6(11):e202301929. https://doi.org/10.26508/lsa.202301929.

Fan X, Moustakas I, Bialecka M, Del Valle JS, Overeem AW, Louwe LA, Pilgram GSK, van der Westerlaken LAJ, Mei H, Chuva de Sousa Lopes SM. Single-Cell Transcriptomics Analysis of Human Small Antral Follicles. Int J Mol Sci. 2021;22(21):11955. https://doi.org/10.3390/ijms222111955.




Загрузок PDF: 35
Опубликован
2025-07-16
Как цитировать
1.
Мотолянец ПМ, Юдина ОА, Смоленский АЗ. ЦИТОМОРФОЛОГИЧЕСКИЕ ОСОБЕННОСТИ ГРАНУЛЕЗНЫХ КЛЕТОК ФОЛЛИКУЛЯРНОЙ ЖИДКОСТИ ПРИ ЭКСТРАКОРПОРАЛЬНОМ ОПЛОДОТВОРЕНИИ. Журнал ГрГМУ (Journal GrSMU) [Интернет]. 16 июль 2025 г. [цитируется по 7 сентябрь 2025 г.];23(3):247-53. доступно на: http://journal-grsmu.by/index.php/ojs/article/view/3291