ИНФОРМАТИВНОСТЬ ТРАДИЦИОННОГО МИКРОБИОЛОГИЧЕСКОГО АНАЛИЗА ПРИ СЕПСИСЕ У ПАЦИЕНТОВ НЕЙРОРЕАНИМАЦИОННОГО ПРОФИЛЯ

  • Ю. Ю. Кирячков Федеральный научно-клинический центр реаниматологии и реабилитологии, Москва, Российская Федерация https://orcid.org/0000-0001-5113-199X
  • Р. Э. Якубцевич Гродненский государственный медицинский университет, Гродно, Беларусь https://orcid.org/0000-0002-8699-8216
  • С. Н. Пузин Федеральный научно-клинический центр реаниматологии и реабилитологии, Москва, Российская Федерация
  • Н. И. Усольцева https://orcid.org/0000-0002-7269-6444
Ключевые слова: микробиологическое исследование, ESCAPE в ликворе, грамотрицательная флора, сепсис

Аннотация

Введение. Выявление микроорганизмов в биологических средах – наиболее распространенный клинико-лабораторный метод диагностики и интенсивной терапии инфекционных осложнений. Идентификация патогенов определяет целевой выбор противомикробных препаратов. Однако обнаружение того или иного вида микробиологической культуры в тканях и органах пациентов не всегда коррелируют с исходами септических состояний. Цель исследования. Провести анализ информативности стандартных микробиологических исследований при сепсисе у пациентов с повреждением головного мозга разного генеза. Материал и методы. В ретроспективное, когортное исследование включены 40 пациентов (мужчин – 23, женщин – 17, средний возраст – 50,43±2,84 года) нейрореанимационного профиля. Изучено значение важнейших микробиологических паттернов биологических сред у выживших пациентов и умерших от сепсиса. Результаты. Обнаружение Acinetobacter baumani, Escherichia coli в моче, Providencia stuartii в трахеобронхиальном аспирате наблюдалось только у умерших пациентов, что можно считать неблагоприятными микробиологическими факторами при сепсисе и септическом шоке. Выводы. Выявлено снижение клинической значимости традиционного метода верификации патогенов при сепсисе.

Литература

Gunsolus IL, Sweeney TE, Liesenfeld O, Ledeboer NA. Diagnosing and Managing Sepsis by Probing the Host Response to Infection: Advances, Opportunities, and Challenges. J Clin Microbiol. 2019;57(7):e00425-19. https://doi.org/10.1128/JCM.00425-19.

Özenci V, Rossolini GM. Rapid microbial identification and antimicrobial susceptibility testing to drive better patient care: an evolving scenario. J Antimicrob Chemother. 2019;74(Suppl 1):i2-i5. https://doi.org/10.1093/jac/dky529.

Piano S, Bartoletti M, Tonon M, Baldassarre M, Chies G, Romano A, Viale P, Vettore E, Domenicali M, Stanco M, Pilutti C, Frigo AC, Brocca A, Bernardi M, Caraceni P, Angeli P. Assessment of Sepsis-3 criteria and quick SOFA in patients with cirrhosis and bacterial infections. Gut. 2018;67(10):1892-1899. https://doi.org/10.1136/gutjnl-2017-314324.

Caraballo C, Jaimes F. Organ Dysfunction in Sepsis: An Ominous Trajectory From Infection To Death. Yale J Biol Med. 2019;92(4):629-640.

Pepper DJ, Sun J, Cui X, Welsh J, Natanson C, Eichacker PQ. Antibiotic- and Fluid-Focused Bundles Potentially Improve Sepsis Management, but High-Quality Evidence Is Lacking for the Specificity Required in the Centers for Medicare and Medicaid Service’s Sepsis Bundle (SEP-1). Crit Care Med. 2019;47(10):1290-1300. https://doi.org/10.1097/CCM.0000000000003892.

Douglas IS. Pulmonary infections in critical/intensive care - rapid diagnosis and optimizing antimicrobial usage. Curr Opin Pulm Med. 2017;23(3):198-203. https://doi.org/10.1097/MCP.0000000000000366.

Long Y, Zhang Y, Gong Y, Sun R, Su L, Lin X, Shen A, Zhou J, Caiji Z, Wang X, Li D, Wu H, Tan H. Diagnosis of Sepsis with Cell-free DNA by Next-Generation Sequencing Technology in ICU Patients. Arch Med Res. 2016;47(5):365-371. https://doi.org/10.1016/j.arcmed.2016.08.004.

Brenner T, Skarabis A, Stevens P, Axnick J, Haug P, Grumaz S, Bruckner T, Luntz S, Witzke O, Pletz MW, Ruprecht TM, Marschall U, Altin S, Greiner W, Berger MM. Optimization of sepsis therapy based on patient-specific digital precision diagnostics using next generation sequencing (DigiSep-Trial)-study protocol for a randomized, controlled, interventional, open-label, multicenter trial. Trials. 2021;22(1):714. https://doi.org/10.1186/s13063-021-05667-x.

Guillamet MCV, Burnham JP, Kollef MH. Novel Approaches to Hasten Detection of Pathogens and Antimicrobial Resistance in the Intensive Care Unit. Semin Respir Crit Care Med. 2019;40(4):454-464. https://doi.org/10.1055/s-00391693160.

Maheshwarappa HM, Guru P, Mundre RS, Lawrence N, Majumder S, Sigamani A, Anupama CN, Adak S. Validation of an Isothermal Amplification Platform for Microbial Identification and Antimicrobial Resistance Detection in Blood: A Prospective Study. Indian J Crit Care Med. 2021;25(3):299-304. https://doi.org/10.5005/jp-journals-10071-23761.




Загрузок PDF: 128
Опубликован
2023-03-06
Как цитировать
1.
Кирячков ЮЮ, Якубцевич РЭ, Пузин СН, Усольцева НИ. ИНФОРМАТИВНОСТЬ ТРАДИЦИОННОГО МИКРОБИОЛОГИЧЕСКОГО АНАЛИЗА ПРИ СЕПСИСЕ У ПАЦИЕНТОВ НЕЙРОРЕАНИМАЦИОННОГО ПРОФИЛЯ. Журнал ГрГМУ (Journal GrSMU) [Интернет]. 6 март 2023 г. [цитируется по 26 апрель 2024 г.];21(1):64-1. доступно на: http://journal-grsmu.by/index.php/ojs/article/view/3012

Наиболее читаемые статьи этого автора (авторов)