СВОБОДНЫЕ АМИНОКИСЛОТЫ В ТКАНИ ПЕЧЕНИ КРЫС ПОСЛЕ ВВЕДЕНИЯ ТРИТАРГА

  • В. М. Шейбак УО «Гродненский государственный медицинский университет»
  • А. Ю. Павлюковец УО «Гродненский государственный медицинский университет»
  • В. Ю. Смирнов УО «Гродненский государственный медицинский университет»
  • А. И. Жмакин УО «Гродненский государственный медицинский университет»

Аннотация

Известно, что введение минизолей в организм вызывает специфические эффекты, во многом определяемые составом и дозами входящих в них компонентов. Аминозоль тритарг, содержащий аргинин, таурин, триптофан и цинка аспартат, оказывает комплексное воздействие на метаболические процессы вследствие сочетанных эффектов входящих в него соединений.
Целью работы стал сравнительный анализ динамики пула свободных аминокислот в ткани печени крыс после введения аминозоля Тритарг.
Материал и методы. Эксперимент проведен на 30 белых беспородных крысах-самках массой 120-140 г, которым ежедневно внутрижелудочно вводили тритарг (таурин, аргинин, триптофан, цинка аспартат) в дозе 350 мг/кг массы. Декапитацию животных осуществляли через 24 ч после 3, 7 или 10-кратного введения тритарга. Для анализа использовали ткань печени. Определение свободных аминокислот производили методом обращеннофазной ВЭЖХ.
Результаты. Через сутки после 7-кратного введения тритарга (период его максимального эффекта) в ткани печени увеличивались общее количество протеиногенных и заменимых аминокислот, сумма глутамат+глутамин (снижено соотношение глутамат/глутамин). Снижалось содержание азотсодержащих метаболитов аминокислот – α-аминоадипиновой кислоты (на 34%), β-аланина (на 31%), цитруллина (на 27%), 3-метилгистидина (на 30%) и α-аминомасляной кислоты (на 30%).
Выводы. Таким образом, регистрируемая общая направленность метаболических потоков после 3- и 7-кратного введения аминозоля носит в большей степени анаболический характер, при этом 10-кратное введение аминозоля приводит к насыщению транспортных потоков и формированию аминокислотного дисбаланса, стимулирующего катаболизм (окисление) избытка азотсодержащих метаболитов.

Литература

Lawson CM, Miller KR, Smith VL, McClave SA. Appropriate protein and specific amino acid delivery can improve patient outcome: fact or fantasy? Curr. Gastroenterol. Rep. 2011;13(4):380-387. doi: 10.1007/s11894-011-0201-0.

Wu G, Bazer FW, Davis TA, Kim SW, Li P, Marc Rhoads J, Carey Satterfield M, Smith SB, Spencer TE, Yin Y. Arginine metabolism and nutrition in growth, health and disease. Amino Acids. 2009;37(1):153-168. doi: 10.1007/s00726-008-0210-y.

Rubinek T, Rubinfeld H, Hadani M, Barkai G, Shimon I. Nitric oxide stimulates growth hormone secretion from human fetal pituitaries and cultured pituitary adenomas. Endocrine. 2005;28(2):209-216. doi: 10.1385/ENDO:28:2:209.

Nikolic J, Stojanovic I, Pavlovic R, Sokolovic D, Bjelakovic G, Beninati S. The role of L-arginine in toxic liver failure: Interrelation of arginase, polyamine catabolic enzymes and nitric oxide synthase. Amino Acids. 2007;32(1):127-131. doi: 10.1007/s00726-006-0309-y.

Laskin JD, Heck DE, Gardner CR, Laskin DL. Prooxidant and antioxidant functions of nitric oxide in liver toxicity. Antioxid. Redox Signal. 2001;3(2):261-271. doi: 10.1089/152308601300185214.

Sheibak VM, Pavliukovets AYu. Arginin i immunnaja sistema – vozmozhnye mehanizmy vzaimodejstvija. Vestnik Vitebskogo gosudarstvennogo medicinskogo universiteta [Vestnik of Vitebsk State Medical University]. 2013;12(1):6-13. (Russiаn).

Miyazaki T, Karube M, Matsuzaki Y, Ikegami T, Doy M, Tanaka N, Bouscarel B. Taurine inhibits oxidative damage and prevents fibrosis in carbon tetrachlorideinduced hepatic fibrosis J. Hepatol. 2005;43(1):117-125. doi: 10.1016/j.jhep.2005.01.033.

Haretskaya MV, Sheibak VM. Gepatoprotektornye svojstva taurina pri intoksikacii paracetamolom [Hepatoprotective properties of taurine during paracetamol intoxication]. Vescі Nacyjanalnaj akadjemіі navuk Belarusі. Seryja medycynskіh navuk. 2013;3:97-103. (Russiаn).

Sandyk R. L-tryptophan in neuropsychiatric disorders: a review. Int. J. Neurosci. 1992;67(1-4):127-144.

Doroshenko EM, Nefedov LI, Smirnov VYu, Prokopchik NI, Razvodovsky YuE, Ostrovsky SYu. Vlijanie smesi aminokislot s razvetvlennoj uglevodorodnoj cepju, taurina i triptofana na strukturu pecheni i fond svobodnyh aminokislot u krys pri subhronicheskoj alkogolnoj intoksikacii i sindrome otmeny jetanola. Novosti nauki i tehniki. Serija: Medicina. Alkogolnaja bolezn. 2001;12:4-10. (Russiаn).

Haase H, Ober-Blцbaum JL, Engelhardt G, Hebel S, Heit A, Heine H, Rink L. Zinc signals are essential for lipopolysaccharide-induced signal transduction in monocytes. J. Immunol. 2008;181(9):6491-6502.

King JC. Zinc: An essential but elusive nutrient. Am. J. Clin. Nutr. 2011;94(2): 679-684. doi: 10.3945/ajcn.110.005744.

Sheibak VM, Pauliukavets AJu. Nekotorye itogi izuchenija biologicheskoj aktivnosti kompozicii tritarg. In: Snezhitskiy VA, executive editor. Aktualnye problemy mediciny. Materialy ezhegodnoj itogovoj nauchno-prakticheskoj konferencii; 2018 Jan. 25-26; Grodno. Grodno: GrGMU; 2018. p. 841-845. (Russiаn).

Furst P, Pogan K, Stehle P. Glutamine dipeptides in clinical nutrition. Nutrition. 1997;13(7-8):731-737.




Загрузок PDF: 170
Опубликован
2018-11-15
Как цитировать
1.
Шейбак ВМ, Павлюковец АЮ, Смирнов ВЮ, Жмакин АИ. СВОБОДНЫЕ АМИНОКИСЛОТЫ В ТКАНИ ПЕЧЕНИ КРЫС ПОСЛЕ ВВЕДЕНИЯ ТРИТАРГА. Журнал ГрГМУ (Journal GrSMU) [Интернет]. 15 ноябрь 2018 г. [цитируется по 29 январь 2023 г.];16(5):585-9. доступно на: http://journal-grsmu.by/index.php/ojs/article/view/2327

Наиболее читаемые статьи этого автора (авторов)

1 2 3 > >>