НЕЙРОГУМОРАЛЬНЫЕ РЕАКЦИИ В ТКАНЯХ БРОНХОВ ПРИ СИМПАТИЧЕСКОЙ СТРЕСС-ЭЛЕКТРОСТИМУЛЯЦИИ
Аннотация
Реализация адаптационно-трофической функции симпатической системы базируется на последовательном синергизме возбуждения альфа- и бета-адренергических клеточных рецепторов. Адаптационная часть функции осуществляется через активацию альфа-адренорецепторов норадреналином терминалей симпатического нерва. Трофическая часть может реализовываться через активацию клеточных бета-адренорецепторов адреналином, который имеет более высокое сродство к бета-адренорецпторам, чем норадреналин. Одним из источников адреналина ткани может быть норадреналин симпатических окончаний, преобразованный в адреналин, локализованным в тканях ферментом фенилэтаноламин-N-метилтрансферазой (ФНМТ). Функциональная недостаточность тканевого фермента может обусловить количественное несоответствие уровней норадреналина и адреналина в ткани, что приведет к рассогласованию сопряжения адаптационного и трофического процесса. Последнее обстоятельство может быть причиной и пусковым механизмом развития процесса тканевой дезадаптации.Литература
Baker D.G., Mc Donald D.M. Distribution of catecholamine-containing nerves on blood vessels of the rat trachea // J. Comp. Neurol. – 1992. – Vol. – 325, № 1. – P. 38-46.
Bao X., Lu C.M., Liu F., Gu Y., Dalton N.D., Zhu B.Q., Foster E., Chen J., Karliner J.S., Ross J. Jr., Simpson P.C., Ziegler M.G. Epinephrine is required for normal cardiovascular responses to stress in the phenylethanolamine N-methyltransferase knockout mouse // Circulation. – 2007. – Vol. 16, № 9. – P. 1024-1031.
Capaldo A., Gay F., Laforgia V., De Falco M., Varano L. The adrenal gland of Triturus carnifex after glucagon administration // Comp. Biochem. Physiol. A Mol. Integr. Physiol. – 2006. – Vol.145, № 2. – P. 188-194.
Davidoff M.S., Ungefroren H., Middendorff R., Koeva Y., Bakalska M., Atanassova N., Holstein A.F., Jezek D., Pusch W., Mьller D. Catecholamine-synthesizing enzymes in the adult and prenatal human testis // Histochem. Cell Biol. – 2005. – Vol.124, № 3. – P. 313-323.
Herlein J.A., Morgan D.A., Phillips B.G., Haynes W.G., Sivitz W.I. Antecedent hypoglycemia, catecholamine depletion, and subsequent sympathetic neural responses // Endocrinology. – 2006. – Vol. 147, № 6. – P. 2781-2788.
Krizanova O., Myslivecek J., 8.Tillinger A., Jurkovicova D., Kubovcakova L. Adrenergic and calcium modulation of the heart in stress: from molecular biology to function // Stress. – 2007. – Vol.10, № 2. – P. 173-184.
Kuroko Y., Yamazaki T., Tokunaga N., Akiyama T., Kitagawa H., Ishino K., Sano S., Mori H. Cardiac epinephrine synthesis and ischemia-induced myocardial epinephrine release // Cardiovasc. Res. – 2007. – Vol.74, № 3. – P. 438-444.
Laverty R., Taylor K. The fluorometric assay of catecholamines and related compounds // Anal. Biochem. – 1968. – Vol. 22. – P. 269-289.
Osinskay O.V. Investigation metabolism of adrenaline and noradrenaline in tissues animal organism // Biochemistry. – 1957. – Vol. 22, № 3. – P. 537-543.
Takahashi E., Nagasu T. Enhanced expression of Ca2+ channel alpha1A and beta4 subunits and phosphorylated tyrosine hydroxylase in the adrenal gland of N-type Ca2+ channel alpha1B subunit-deficient mice with a CBA/JN genetic background // Comp Med. – 2006. – Vol. 56, № 3. – P. 168-175.
Wong D.L. Epinephrine biosynthesis: hormonal and neural control during stress // Cell. Mol. Neurobiol. – 2006. – Vol.26, № 4. – P. 891-900.
Wong D.L., Tank A.W. Stress-induced catecholaminergic function: transcriptional and post-transcriptional control // Stress. – 2007. – Vol. 10, № 2. – P. 121-130.
