КИСЛОРОДТРАНСПОРТНАЯ ФУНКЦИЯ КРОВИ И ПРООКСИДАНТНО-АНТИОКСИДАНТНОЕ СОСТОЯНИЕ ОРГАНИЗМА В УСЛОВИЯХ КОРРЕКЦИИ L-АРГИНИН-NO СИСТЕМЫ ПРИ ВВЕДЕНИИ ЛИПОПОЛИСАХАРИДА

  • Е. В. Шульга УО «Гродненский государственный медицинский университет»
Ключевые слова: аминогуанидин, липополисахарид, кислород, оксид азота, антиоксидант

Аннотация

В исследовании на кроликах было показано, что селективная коррекция L-аргинин-NO системы аминогуанидином через NO-зависимый механизм улучшает показатели кислородтранспортной функции крови, повышает СГК и участвует в поддержании прооксидантно-антиоксидантного баланса организма через 12 часов после инъекции липополисахарида.

Литература

Бонарцев А.П. и др. Влияние хронического введения аминогуанидина на реактивность легочных сосудов у крыс с монокроталиновой моделью легочной гипертензии // Рос. физиол. журн. им. И.М. Сеченова. – 2004. – Т. 90, № 7. – С. 908-915.

Камышников В.С. Справочник по клинико-биохимической лабораторной диагностике – Минск, 2002. – Т. 2. – 463 с.

Орлова Е.А. Комаревцева И.А. Роль NO-синтазы в стимуляции опиатных рецепторов и устойчивости почек к оксидативному стрессу // Укр. биохим. журн. – 2004. – Т. 76, № 1. – С. 97-102.

Рагино Ю.И. и др. Применение новых биохимических способов для оценки окислительно-антиоксидантного потенциала липопротеинов низкой плотности // Клин. лаб. диагн. – 2005. – № 4 . – С. 11-15.

Малышева Е.В. и др. Роль экстраклеточного и внутриклеточного окисда азота в регуляции клеточных ответов макрофагов // Бюл. эксп. биол. мед. – 2006. – Т. 141, № 4. – С. 386-388.

Aruoma O.I., Cuppett S.L Antioxidant Methodology: in vivo and in vitro Concepts // New York, AOCSPress, 1997. – 256 p.

Bryan N.S., Grisham M.B. Methods to detect nitric oxide and its metabolites in biological samples // Free Radic. Biol. Med. – 2007. – Vol. 43, № 5. – P. 645-657.

Shen K.P. et al. Eugenosedin-A amelioration of lipopolysaccharide-induced up-regulation of p38 MAPK, inducible nitric oxide synthase and cyclooxygenase-2 // J. Pharm. Pharmacol. – 2007. – Vol. 59, № 6. – P. 879-889.

Kawano T. et al. iNOS-derived NO and nox2-derived superoxide confer tolerance to excitotoxic brain injury through peroxynitrite // J. Cereb. Blood Flow Metab. – 2007. – Vol. 27, № 8. – P. 1453-1462.

Mik E.G., Johannes T., Ince C. Monitoring of renal venous pO2 and kidney oxygen consumption in rats by a near-infrared phosphorescence lifetime technique // Am. J. Physiol. Renal. Physiol. – 2008. – Vol. 294, № 3. – F. 676-681.

Rice-Evans C.A., Diplock A.T., Symons M.C.R Laboratory techniques in biochemistry and molecular biology: techniques in free radical research – Elsevier, 1991. – 291 p.

Victor V.M. et al. Role of free radicals in sepsis: antioxidant therapy // Curr. Pharm. Des. – 2005. – Vol. 11, № 24. – P. 3141-3158.

Sсheid P., Meyer M. Mixing technigue for study of oxygen-hemoglobin eguilibrium: a critical evaluation // J. Appl. Physiol. – 1978. – Vol. 45, № 5. – P. 616-622.

Severinghaus J.W. Blood gas calculator // J. appl. Physiol. – 1966. – Vol. 21, № 5. – P. 1108-1116.

Tang H.X., Fan X.M. Effect of dexamethasone, aminoguanidin, amrinone on oxygen utilization in endotoxin shock rabbits // Zhonghua Er. Ke. Za. Zhi. – 2003. – Vol. 41, № 4. – P. 282-285.

Ogetman Z. et al. The effect of aminoguanidine on blood and tissue lipid peroxidation in jaundiced rats with endotoxemia induced with LPS // J. Invest. Surg. – 2006. – Vol. 19, № 1. – P. 19-30.

Wang L., Fan X.M., Tang H.X. Effects of aminoguanidine in different dosages on renal function in endotoxin induced rabbits shock model // Zhonghua Er. Ke. Za. Zhi. – 2004. – Vol. 42, № 3. – P. 206-209.




Загрузок PDF: 86
Опубликован
2015-09-24
Как цитировать
1.
Шульга ЕВ. КИСЛОРОДТРАНСПОРТНАЯ ФУНКЦИЯ КРОВИ И ПРООКСИДАНТНО-АНТИОКСИДАНТНОЕ СОСТОЯНИЕ ОРГАНИЗМА В УСЛОВИЯХ КОРРЕКЦИИ L-АРГИНИН-NO СИСТЕМЫ ПРИ ВВЕДЕНИИ ЛИПОПОЛИСАХАРИДА. Журнал ГрГМУ (Journal GrSMU) [Интернет]. 24 сентябрь 2015 г. [цитируется по 14 апрель 2024 г.];(2(26):49-1. доступно на: http://journal-grsmu.by/index.php/ojs/article/view/722