РЕДОКС-ГОМЕОСТАЗ БИОЛОГИЧЕСКИХ СИСТЕМ:  ТЕОРИЯ И ЭКСПЕРИМЕНТ

С. Н. Черенкевич; Г. Г. Мартинович; И. В. Мартинович; Е. Н. Голубева

С. Н. Черенкевич Белорусский государственный университет
Г. Г. Мартинович Белорусский государственный университет
И. В. Мартинович Белорусский государственный университет
Е. Н. Голубева Белорусский государственный университет

Ключевые слова: редокс-гомеостаз, редокс-сигнализация, окислительный стресс

Аннотация

В работе рассматриваются современные представления о механизмах регуляции редокс-гомеостаза биологических систем. Обсуждаются способы количественного описания редокс-процессов в биологических системах. Показано, что параметры редокс-гомеостаза необходимо рассматривать как регуляторные факторы трансдукции сигналов в клетках.

Литература

Мартинович Г.Г., Черенкевич С.Н., Денисов А.А., Молчанов П.Г., Глеб С.П. Модификация кальциевого гомеостаза в модельных клетках С6 и РС12 при окислительном стрессе // Весці НАН Беларусі. Сер. мед.-біял. навук. – 2002. – № 4. – C. 70-76.

Мартинович Г.Г., Мартинович И.В., Черенкевич С.Н. Количественная характеристика редокс-состояния эритроцитов // Биофизика. – 2008, – Т. 53. - С. 618-623.

Мартинович Г.Г., Черенкевич С.Н. Окислительно-восстановительные процессы в клетках. – Мн.: БГУ, 2008.– 159 c.

Мартинович Г.Г., Черенкевич С.Н. Редокс-гомеостаз клеток // Успехи физиологических наук. – 2008. – Т. 39, № 3. – C.29-44.

Черенкевич С.Н., Мартинович Г.Г. Активные формы кислорода и регуляция клеточных функций // Вестн. ГрГУ им. Я. Купалы. Серия 2. – 2008. - №1. – С. 109-117.

Attene-Ramos M., Kitiphongspattana K., Ishii-Schrade K., Gaskins H. Temporal changes of multiple redox couples from proliferation to growth arrest in IEC-6 intestinal epithelial cells // Am. J. Physiol. Cell. Physiol., – 2005. – Vol. 289. – P. C1220–C1228.

Berridge M., Bootman M., Roderick H. Calcium signalling: dynamics, homeostasis and remodelling // Nat. Rev. Mol. Cell Biol. – 2003. – Vol. 4. – P. 517–529.

Bielefeldt K., Whiteis C., Sharma R., Abboud F., Conklin J. Reactive oxygen species and calcium homeostasis in cultured human intestinal smooth muscle cells // Am. J. Physiol. – 1997. – Vol. 272. – P. G1439- G1450.

Carafoli E., Santella L., Branca D., Brini M. Generation, control, and processing of cellular calcium signals // Crit. Rev. Biochem. Mol. Biol. – 2001. – Vol. 36. – P. 107–260.

Janssen-Heininger Y.M., Mossman B.T., Heintz N.H., Forman H.J., Kalyanaraman B., Finkel T., Stamler J.S., Rhee S.G., Van der Vliet A. Redox-based regulation of signal transduction: Principles, pitfalls, and promises // Free Rad. Biol. Med. – 2008. – Vol. 45, P. 1–17.

Jones D.P. Redox potential of GSH/GSSG couple: assay and biological significance // Methods Enzymol. – 2002. – Vol. 348. – P. 93–112.

Giambelluca M.S., Gende O.A. Hydrogen peroxide activates calcium influx in human neutrophils // Mol. Cell. Biochem. – 2008. – Vol. 309, P. 151–156.

Martinovich G.G., Cherenkevich S.N., Sauer H. Intracellular redox state: towards quantitative description // Eur. Biophys. J. – 2005. –Vol. 34,–P. 937–942.

Meyer T., Gloy J., Hug M., Greger R., Schollmeyer P., Pavenstadt H. Hydrogen peroxide increases the intracellular calcium activity in rat mesangial cells in primary culture // Kidney Int. – 1996. – Vol. 49. – P. 388-395.

Nam S., Jung S., Yoo C., Ahn E., Suh C. H2O2 enhances Ca2+ release from osteoblast internal stores // Yonsei Med. J. – 2002. – Vol. 43, №3. – P.229-235.

Sies H., Jones D.P. Oxidative stress. – Elsevier, San Diego, 2007.