ПРОТЕКТОРНЫЕ СВОЙСТВА ДИАРИЛГЕПТАНОИДА ОРЕГОНИНА ПРИ ВВЕДЕНИИ ЖИВОТНЫМ ЦИКЛОФОСФАМИДА
Аннотация
Введение. Введение некоторых диарилгептаноидов способно усиливать эффективность циклофосфамида и снижать активность процессов перекисного окисления липидов, что позволяет снизить дозу цитостатика и уменьшить его побочные эффекты.
Цель исследования – определение протекторных свойств диарилгептаноида орегонина в отношении токсических эффектов циклофосфамида на лейкоцитарную формулу, концентрации свободных аминокислот в плазме крови и ткани селезенки.
Материал и методы. В работе использованы крысы-самцы, получавшие циклофосфамид (160 мг/кг массы) и орегонин (5 мг/кг массы). Определение свободных аминокислот производили методом обращеннофазной ВЭЖХ.
Результаты. Установлено, что курсовое введение орегонина совместно с циклофосфамидом увеличивает содержание аминокислот и их производных в плазме крови и обеспеченность клеток селезенки протеиногенными аминокислотами.
Выводы. Курсовое введение орегонина совместно с циклофосфамидом оказывает протекторное действие в отношении аминокислотного дисбаланса в плазме крови и ткани селезенки.
Литература
Bobrysheva IV. Izmenenija ultrastruktury timusa belyh krys posle vvedenija ciklofosfamida. Vestnik Vitebskogo gosudarstvennogo medicinskogo universiteta. 2013;12(4):63-69. (Russian).
Loseva LF, Donenko FV, Lebedinskaja OV, Ahmatov JeA, Lebedinskaja EA, Godovalov AP, Melehin CB. Nekotorye osobennosti farmakodinamiki ciklofosfana u jeksperimentalnyh zhivotnyh. Medicinskaja immunologija. 2011;13(4-5):52. (Russian).
Barabanova SV, Andreeva JuV, Artjuhina ZE, Ovchinnikova KT, Perekrest SV, Rodzher SV, Korneva EA. Kletochnyj sostav krovi i kostnogo mozga posle vvedenija ciklofosfamida i obluchenija kozhi jelektromagnitnymi volnami krajne vysokoj chastoty. Nefrologija. 2007;11(2):72-77. (Russian).
Tsai-Turton M, Luong BT, Tan Y, Luderer U. Cyclophosphamide induced apoptosis in COV434 human granulose cells involves oxidative stress and glutathione depletion. Toxicol. Sci. 2007;98:216-230.
Cai J, Bhatnagar A, Pierce WM. Protein modification by acrolein: Formation and stability of cysteine adducts. Chem. Res. Toxicol. 2009;22:708-716.
Motoyoshi Y, Saitoh O, Hamasaki K, Nakao K, Ishii N, Nagayama Y, Eguchi K. Different mechanisms for anti-tumor effects of low-and high-dose cyclophosphamide. Oncol. Rep. 2006;16(1):141-146.
Weijl NI, Cleton FJ, Osanto S. Free radicals and antioxidants in chemotherapy-induced toxicity. Cancer Treatment Reviews. 1997;23:209-240.
Prakash GV, Singh SM, Singh MP, Singh G. Effect of intrauterine exposure of murine fetus to cyclophosphamide on development of thyms. Immunopharmacology and Immunotoxicology. 2007;29:17-30.
Kuroyanagi М, Shimomae M, Nagashima Y, Muto N, Okuda T, Kawahara N, Nakane T, Sano T. New diarylheptanoids from Alnus japonica and their antioxidative activity. Chem. Pharm. Bull. 2005;53(12):1519-1523.
Venkatesan N, Chandrakasan G. Modulation of cyclophosphamide-induced early lung injury by curcumin,an anti-inflammatory antioxidant. Mol. Cell. Biochem. 1995;1:79-87.
Xiao H, Zhang KJ. Antiproliferative effect of curcumin combined with cyclophosmide on the growth of human lymphoma cell lineHT/CTX with drug resistance and its relation with FA/BRCA pathway. Zhongguo Shi Yan Xue Ye Xue Za Zhi. 2008;16(4):804-808.
Kim HJ, Kim KH, Yeom SH. New diarylheptanoid from the barks of Alnus japonica Steudel. Chin. Chem. Lett. 2005;16:1337-1340.
Middleton EJr, Kandaswami C, Theoharides TC. The effects of plant flavonoids on mammalian cells: implications for inflammation, heart disease, and cancer. Pharmacol. Rev. 2000;52(4):673-751.
Lv H, She G. Naturally occurring diarylheptanoids. Nat. Prod. Commun. 2010;5(10):1687-1708.
Choi SE, Jeong MS, Kang MJ, Lee DI, Joo SS, Lee CS, Bang H, Lee MK, Myung SC, Choi YW, Li K, Seo SJ, Lee MW. Effect of topical application and intraperitonial injection of oregonin on atopic dermatitis in NC/Nga mice. Experimental Dermatology. 2009;19:37-49.
Claeson P, Ponqprayoon U, Sematonq T, Tuchinada P, Reutrakul V, Soontornsaratune P, Taylor WC. Nonphenolic linear diarylheptanoids from Curcuma xanthorrhiza: a novel type of topical anti-inflammatory agents: structure-activity relationship. Planta Med. 1996;62(3):236-240.
Guz NR, Lorenz P, Mеtraux JP. Oregonin from the bark of European Alnus species. Biochem. Syst. Ecol. 2002;30:471-474.
Saxena G. Farmer S, Hancock RE, Towers GH. Аntimicrobial compounds from Alnus rubra. Int. J. Pharmacogn. 1995;33:33-36.
Lee MW, Kim NY, Park MS. Diarylheptanoids with in vitro inducible nitric oxide synthesis inhibitory activity from Alnus hirsute. Planta Med. 2000;66(6):551-553.
Kang MJ, Eum J.Y, Jeong MS. Facilitated Skin Permeation of Oregonin by Elastic Liposomal Formulations and Suppression of Atopic Dermatitis in NC/Nga Mice. Biol. Pharm. Bull. 2010;33(1):100-106.
Pauliukovets A, Sheibak V, Manidova A, Telysheva G. Cytoprotection effect of oregonin diarylheptanoid with a course administration of cyclophosphamide: abstracts 48th Congress of the Polish Biochemical Society Meeting; 2013, September 2-5; Torun. Acta Biochimica Polonica. 2013;60(1):25.
Luiking YC, Deutz NEP. Biomarkers of arginine and lysine excess. J. Nutr. 2007;137(6):1662-1668.
Grimble RF. The Effects of Sulfur Amino Acid Intake on Immune Function in Humans. J. Nutr. 2006;136:1660-1665.
Oliveira MWS, Minotto JB, de Oliveira MR, Zanotto-Filho A, Behr GA, Rocha RF. Moreira JCF, Klamt F. Scavenging and antioxidant potential of physiological taurine concentrations against different reactive oxygen/nitrogen species. Pharmacol. Rep. 2010;62:185-193.
Fallarino F, Grohmann U, Vacca C, Bianchi R, Orabona C, Spreca A, Fioretti MC, Puccetti P. T cell apoptosis by tryptophan catabolism. Cell Death Differ. 2002;9:1069-1077.
Kiess AS, Manangi MK, Cleveland BM, Wilson ME, Blemings KP. Effect of dietary lysine on hepatic lysine catabolism in broilers. Poult. Sci. 2013;92(10):2705-2712.
