ТРИХИНЕЛЛЁЗ КАК ФАКТОР, ОПРЕДЕЛЯЮЩИЙ ИЗМЕНЕНИЕ ЭКСПРЕССИИ ПРОТООНКОГЕНОВ И ГЕНА-СУПРЕССОРА В ЭКСПЕРИМЕНТЕ

В. В. Побяржин

doi:10.25298/2221-8785-2021-19-1-91-95

В. В. Побяржин Витебский государственный ордена Дружбы народов медицинский университет, Витебск, Беларусь https://orcid.org/0000-0002-3508-9995

DOI: https://doi.org/10.25298/2221-8785-2021-19-1-91-95

Ключевые слова: крыса, глиома, трихинеллы, экспрессия, гены

Аннотация

Цель. Изучить трихинеллёз как фактор, определяющий изменение экспрессии протоонкогенов и гена- супрессора в эксперименте.

Материал и методы. Экспериментальные животные были разделены на 3 группы. У самок крыс 1 («контроль с опухолью») и 2 групп («глиома в сочетании с трихинеллёзом», заражение в дозе 20 личинок Trichinella spiralis на 1 грамм массы тела животного) моделировали опухоль глиомы С6 in situ.

Забор материала у животных 1 группы проводили на 14, 21, 28, 35 дни развития опухоли, соответственно (опухоль, печень, лёгкие, головной мозг). У самок 2 группы биоптаты (опухоль, печень, лёгкие, головной мозг) забирали на 7-е (14-е сутки развития опухоли), 14-е (21-е сутки развития опухоли), 21-е (28-е сутки развития опухоли), 28-е сутки после заражения (35-е сутки развития опухоли), а у животных 3 группы – однократно (печень, лёгкие, головной мозг).

Выделение РНК из материала осуществляли колоночным методом. Амплификация проводилась на термо- циклере Real-Time PCR. Сравнительная экспрессия изучаемых генов была проведена после нормализации каждого из образцов к уровню контрольных генов GAPDH и ACTIN-β. Анализ экспрессии проводился с помощью программы qbase+ и CFX Maestro.

Результаты. Инвазия хозяина трихинеллами приводит к увеличению экспрессии сурвивина (BIRC5), GLI, VEGF и TP53 в тканях лёгких, печени, головного мозга.

Вывод. Воздействие трихинелл может вызывать инициацию канцерогенных процессов и усугублять их течение.

Литература

Liao C, Cheng X, Liu M, Wang X, Boireau P. Trichinella spiralis and Tumors: Cause, Coincidence or Treatment? Anticancer Agents Med Chem. 2018;18(8):1091-1099. https://doi.org/10.2174/1871520617666171121115847.

Zarlenga D, Wang Z, Mitreva M. Trichinella spiralis: Adaptation and parasitism. Vet Parasitol. 2016;231:8-21. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2016.07.003.

Kosanović M, Cvetković J, Gruden-Movsesijan A, Vasilev S, Milanović S, Ilić N, Sofronić-Milosavljević, L. Trichinella spiralis muscle larvae release extracellular vesicles with immunomodulatory properties. Parasite Immunol. 2019;41(10):e12665. https://doi.org/10.1111/pim.12665.

Pashinskaya ES, Pabiarzhyn VV. Sposob vosproizvedenija jeksperimentalnoj krysinoj gliomy S6 in situ [Method of re- production of experimental rat glioma C6 in situ]. Mediko-biologicheskie problemy zhiznedejatelnosti [Medical and Biological Problems of Life Activity]. 2019;22(2):50-55.

Honeycutt J, Hammam O, Fu CL, Hsieh MH. Controversies and challenges in research on urogenital schistosomiasis-associated bladder cancer. Trends Parasitol. 2014;30(7):324-32. https://doi.org/10.1016/j.pt.2014.05.004.

Ploeg M, Aben KK, Kiemeney LA. The present and future burden of urinary bladder cancer in the world. World J Urol. 2009;27(3):289-93. https://doi.org/10.1007/s00345-009-0383-3.

Salem HK, Mahfouz S. Changing patterns (age, incidence, and pathologic types) of schistosoma-associated bladder cancer in Egypt in the past decade. Urology. 2012;79(2):379-83. https://doi.org/10.1016/j.urology.2011.08.072.

Buisson Y. Vaincre la distomatose à Opisthorchis viverrini pour prévenir le cholangiocarcinome [Control of Opisthorchis viverrini infection for cholangiocarcinoma prevention]. Bull Soc Pathol Exot. 2017;110(1):61-67. https://doi.org/10.1007/s13149-017-0544-8 (French).

Smout MJ, Sripa B, Laha T, Mulvenna J, Gasser RB, Young ND, Bethony JM, Brindley PJ, Loukas A. Infection with the carcinogenic human liver fluke, Opisthorchis viverrini. Mol Biosyst. 2011;7(5):1367-75. https://doi.org/10.1039/c0mb00295j.